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手性β-氨基醇生物催化合成實驗技術 版權信息
- ISBN：9787122399496
- 條形碼：9787122399496 ; 978-7-122-39949-6
- 裝幀：一般膠版紙
- 冊數：暫無
- 重量：暫無
- 所屬分類：>
手性β-氨基醇生物催化合成實驗技術 本書特色
1.詳細介紹了β-氨基醇及其生物催化合成方法 2.主要介紹了手性β-氨基醇生物合成方面取得的重要成果 3.內容緊跟前沿，知識面廣，且有一定的理論深度 4.內容反映了新興生物催化領域的新發展趨勢
手性β-氨基醇生物催化合成實驗技術 內容簡介
本書主要介紹手性β-氨基醇及其生物催化合成方法，對手性β-氨基醇的應用及其合成方法進行了概述，全面系統地介紹了在手性β-氨基醇生物合成方面取得的重要成果，讓讀者充分了解手性β-氨基醇的生物催化合成方法。本書從原理到應用，結構嚴謹，內容緊跟前沿，知識面廣，且有一定的理論深度，充分反應了手性β-氨基醇的發展動態，體現了新興生物催化領域的新發展趨勢。 本書可供從事化學化工﹑生物工程﹑制藥工程等專業的高等院校﹑科研機構﹑企業的師生﹑研究人員和工程技術人員參考使用。
手性β-氨基醇生物催化合成實驗技術 目錄
**章 手性β-氨基醇概述 1
1.1 手性β-氨基醇簡介 2
1.2 手性β-氨基醇的應用 2
1.3 手性β-氨基醇的合成 3
1.3.1 化學法合成手性β-氨基醇 3
1.3.2 生物法合成手性β-氨基醇 9
參考文獻 19
第二章 β-氨基醇特異性轉氨酶高通量篩選方法的建立 26
2.1 引言 27
2.2 實驗材料與儀器 27
2.2.1 菌株來源 27
2.2.2 實驗試劑 28
2.2.3 實驗儀器 28
2.3 實驗方法 28
2.3.1 顯色反應條件探究 28
2.3.2 篩選方法靈敏度探究 29
2.3.3 轉氨酶的篩選 30
2.3.4 分析方法 30
2.4 結果與分析 30
2.4.1 顯色條件 30
2.4.2 篩選方法的靈敏度 33
2.4.3 全細胞空白對照 34
2.4.4 轉氨酶的篩選 34
2.5 小結 35
參考文獻 35
第三章 惡臭假單胞菌ω-轉氨酶基因的克隆及其在手性β-氨基醇合成中的應用 36
3.1 惡臭假單胞菌中ω-轉氨酶基因的克隆與重組表達 37
3.1.1 引言 37
3.1.2 實驗材料與儀器 37
3.1.3 實驗方法 39
3.1.4 結果與分析 42
3.1.5 小結 47
3.2 惡臭假單胞菌ω-轉氨酶酶學性質表征及其底物特異性研究 48
3.2.1 引言 48
3.2.2 實驗材料 48
3.2.3 實驗方法 49
3.2.4 結果與分析 52
3.2.5 小結 58
參考文獻 59
第四章 結核分枝桿菌轉氨酶(MVTA)的克隆及其在手性β-氨基醇合成中的應用 60
4.1 引言 61
4.2 實驗材料與儀器 61
4.2.1 菌株與質粒 61
4.2.2 試劑盒 61
4.2.3 實驗試劑 61
4.2.4 實驗儀器 62
4.2.5 培養基及其他試劑配制 63
4.3 實驗方法 64
4.3.1 引物設計及目的基因的PCR擴增 64
4.3.2 轉氨酶MVTA表達載體的構建及目的蛋白質的表達與純化 65
4.3.3 酶活力測定方法 67
4.3.4 轉氨酶MVTA酶活力的*適反應pH及pH穩定性 68
4.3.5 轉氨酶MVTA酶活力的*適反應溫度及溫度穩定性 68
4.3.6 轉氨酶MVTA動力學參數和對映選擇性測定 68
4.3.7 轉氨酶MVTA不對稱胺化α-羥基酮氨基供體的篩選 69
4.3.8 轉氨酶MVTA不對稱胺化α-羥基酮 70
4.3.9 不同濃度二甲基亞砜對反應的影響 70
4.3.10 不同濃度R-苯乙胺對反應的影響 70
4.3.11 產物L-苯甘氨醇對反應的影響 71
4.3.12 產物苯乙酮對反應的影響 71
4.3.13 反應過程中底物濃度、反應時間和細胞用量對反應的影響 71
4.3.14 制備S構型苯甘氨醇 71
4.3.15 分析方法 71
4.4 結果與分析 72
4.4.1 重組載體的構建 72
4.4.2 MVTA目的蛋白質的表達及純化 73
4.4.3 轉氨酶的*適pH 73
4.4.4 轉氨酶pH穩定性 74
4.4.5 轉氨酶的*適溫度 74
4.4.6 轉氨酶溫度穩定性 75
4.4.7 MVTA動力學參數和對映選擇性測定 76
4.4.8 MVTA動力學拆分外消旋β-氨基醇 77
4.4.9 不對稱胺化α-羥基酮氨基供體的選擇 78
4.4.10 pH對不對稱還原胺化反應的影響 78
4.4.11 溫度對不對稱還原胺化反應的影響 78
4.4.12 助溶劑二甲基亞砜（DMSO）濃度對不對稱還原胺化反應的影響 79
4.4.13 底物濃度和產物濃度對不對稱還原胺化反應的影響 80
4.4.14 細胞用量對不對稱還原胺化反應的影響 80
4.4.15 MVTA不對稱胺化α-羥基酮 81
4.4.16 制備S-苯甘氨醇 82
4.5 小結 83
參考文獻 84
第五章 巨大芽孢桿菌轉氨酶BMTA的克隆及其在手性鄰氨基醇合成中的應用 85
5.1 引言 86
5.2 實驗部分 87
5.2.1 材料與試劑 87
5.2.2 實驗方法 87
5.2.3 分析方法 90
5.3 結果與討論 90
5.3.1 ω-轉氨酶BMTA的表達、純化和酶活檢測 90
5.3.2 pH對ω-轉氨酶BMTA活性及穩定性的影響 91
5.3.3 溫度對ω-轉氨酶BMTA活性及穩定性的影響 91
5.3.4 ω-轉氨酶BMTA的底物特異性 92
5.3.5 ω-轉氨酶BMTA動力學拆分外消旋?-氨基醇 93
5.3.6 ω-轉氨酶BMTA不對稱還原胺化羥酮 93
5.3.7 ω-轉氨酶BMTA動力學拆分外消旋苯甘氨醇制備（S）-苯甘氨醇 94
5.4 小結 94
參考文獻 94
第六章 羰基還原酶組合轉氨酶級聯催化外消旋β-氨基醇同時制備手性β-氨基醇和手性鄰二醇 95
6.1 羰基還原酶的克隆與表達 96
6.1.1 引言 96
6.1.2 實驗材料與儀器 96
6.1.3 分析方法 98
6.1.4 實驗方法 99
6.1.5 實驗結果 103
6.1.6 小結 107
6.2 羰基還原酶酶學性質表征 107
6.2.1 引言 107
6.2.2 實驗材料與儀器 108
6.2.3 分析方法 108
6.2.4 實驗方法 109
6.2.5 實驗結果 110
6.2.6 小結 115
6.3 羰基還原酶與葡萄糖脫氫酶在E.coli中共表達及不對稱還原?-羥酮 116
6.3.1 引言 116
6.3.2 實驗材料與儀器 117
6.3.3 分析方法 117
6.3.4 實驗方法 118
6.3.5 實驗結果與分析 121
6.3.6 小結 128
6.4 級聯生物催化外消旋β-氨基醇同時制備手性β-氨基醇和鄰二醇 129
6.4.1 引言 129
6.4.2 實驗材料與儀器 129
6.4.3 實驗方法 130
6.4.4 分析方法 132
6.4.5 結果與分析 132
6.4.6 小結 139
參考文獻 140
第七章 環氨基醇特異性脫氨酶產生菌的篩選及其應用于手性環氨基醇的合成 141
7.1 高活力高選擇性環氨基醇脫氨酶產生菌的篩選 142
7.1.1 引言 142
7.1.2 實驗材料與儀器 142
7.1.3 實驗方法 144
7.1.4 結果與分析 148
7.1.5 小結 154
7.2 節桿菌環己胺氧化酶的克隆及其酶學性質表征 155
7.2.1 引言 155
7.2.2 實驗材料與儀器 155
7.2.3 實驗方法 157
7.2.4 結果與分析 162
7.2.5 小結 170
參考文獻 171
第八章 生物催化環氧化物不對稱開環制備手性β-氨基醇 172
8.1 醇脫氫酶的篩選 173
8.1.1 引言 173
8.1.2 實驗材料 174
8.1.3 實驗方法 177
8.1.4 實驗結果分析 180
8.1.5 小結 182
8.2 立體選擇性級聯生物催化外消旋二醇合成手性β-氨基醇 183
8.2.1 引言 183
8.2.2 實驗材料 183
8.2.3 實驗方法 185
8.2.4 實驗結果 187
8.2.5 小結 191
8.3 三酶共表達重組菌的構建及催化苯乙二醇合成手性β-氨基醇 191
8.3.1 引言 191
8.3.2 實驗材料 191
8.3.3 實驗方法 192
8.3.4 實驗結果 195
8.3.5 小結 198
8.4 多酶級聯催化環氧化物不對稱開環合成手性β-氨基醇 198
8.4.1 引言 198
8.4.2 實驗材料 199
8.4.3 實驗方法 200
8.4.4 實驗結果 212
8.4.5 小結 222
參考文獻 223
第九章 級聯生物催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇的研究 224
9.1 引言 225
9.2 實驗材料 225
9.2.1 實驗藥品 225
9.2.2 培養基 226
9.2.3 實驗儀器 226
9.3 實驗方法 227
9.3.1 重組大腸桿菌的構建 227
9.3.2 重組大腸桿菌的誘導表達 228
9.3.3 目的蛋白質的酶活力檢測 228
9.3.4 凍干酶粉的制備 229
9.3.5 多酶級聯體系催化烯烴1a不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a的條件優化 229
9.3.6 多酶級聯體系催化烯烴1a～j不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a～j 230
9.3.7 共表達體系的構建 231
9.3.8 兩種重組大腸桿菌細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 235
9.3.9 共表達細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 236
9.3.10 E.coli（CGS-DEM）和E.coli（CGS-DEB）制備手性β-氨基醇 237
9.3.11 氣相色譜分析法 237
9.4 結果與討論 239
9.4.1 重組大腸桿菌的構建 239
9.4.2 多酶級聯催化烯烴1a不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a的條件優化 240
9.4.3 多酶級聯催化烯烴1a～j不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a～j 242
9.4.4 共表達體系的構建 243
9.4.5 兩種重組大腸桿菌細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 245
9.4.6 共表達細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 247
9.4.7 E.coli（CGS-DEM）和E.coli（CGS-DEB）制備手性β-氨基醇 249
9.5 小結 249
參考文獻 250
1.1 手性β-氨基醇簡介 2
1.2 手性β-氨基醇的應用 2
1.3 手性β-氨基醇的合成 3
1.3.1 化學法合成手性β-氨基醇 3
1.3.2 生物法合成手性β-氨基醇 9
參考文獻 19
第二章 β-氨基醇特異性轉氨酶高通量篩選方法的建立 26
2.1 引言 27
2.2 實驗材料與儀器 27
2.2.1 菌株來源 27
2.2.2 實驗試劑 28
2.2.3 實驗儀器 28
2.3 實驗方法 28
2.3.1 顯色反應條件探究 28
2.3.2 篩選方法靈敏度探究 29
2.3.3 轉氨酶的篩選 30
2.3.4 分析方法 30
2.4 結果與分析 30
2.4.1 顯色條件 30
2.4.2 篩選方法的靈敏度 33
2.4.3 全細胞空白對照 34
2.4.4 轉氨酶的篩選 34
2.5 小結 35
參考文獻 35
第三章 惡臭假單胞菌ω-轉氨酶基因的克隆及其在手性β-氨基醇合成中的應用 36
3.1 惡臭假單胞菌中ω-轉氨酶基因的克隆與重組表達 37
3.1.1 引言 37
3.1.2 實驗材料與儀器 37
3.1.3 實驗方法 39
3.1.4 結果與分析 42
3.1.5 小結 47
3.2 惡臭假單胞菌ω-轉氨酶酶學性質表征及其底物特異性研究 48
3.2.1 引言 48
3.2.2 實驗材料 48
3.2.3 實驗方法 49
3.2.4 結果與分析 52
3.2.5 小結 58
參考文獻 59
第四章 結核分枝桿菌轉氨酶(MVTA)的克隆及其在手性β-氨基醇合成中的應用 60
4.1 引言 61
4.2 實驗材料與儀器 61
4.2.1 菌株與質粒 61
4.2.2 試劑盒 61
4.2.3 實驗試劑 61
4.2.4 實驗儀器 62
4.2.5 培養基及其他試劑配制 63
4.3 實驗方法 64
4.3.1 引物設計及目的基因的PCR擴增 64
4.3.2 轉氨酶MVTA表達載體的構建及目的蛋白質的表達與純化 65
4.3.3 酶活力測定方法 67
4.3.4 轉氨酶MVTA酶活力的*適反應pH及pH穩定性 68
4.3.5 轉氨酶MVTA酶活力的*適反應溫度及溫度穩定性 68
4.3.6 轉氨酶MVTA動力學參數和對映選擇性測定 68
4.3.7 轉氨酶MVTA不對稱胺化α-羥基酮氨基供體的篩選 69
4.3.8 轉氨酶MVTA不對稱胺化α-羥基酮 70
4.3.9 不同濃度二甲基亞砜對反應的影響 70
4.3.10 不同濃度R-苯乙胺對反應的影響 70
4.3.11 產物L-苯甘氨醇對反應的影響 71
4.3.12 產物苯乙酮對反應的影響 71
4.3.13 反應過程中底物濃度、反應時間和細胞用量對反應的影響 71
4.3.14 制備S構型苯甘氨醇 71
4.3.15 分析方法 71
4.4 結果與分析 72
4.4.1 重組載體的構建 72
4.4.2 MVTA目的蛋白質的表達及純化 73
4.4.3 轉氨酶的*適pH 73
4.4.4 轉氨酶pH穩定性 74
4.4.5 轉氨酶的*適溫度 74
4.4.6 轉氨酶溫度穩定性 75
4.4.7 MVTA動力學參數和對映選擇性測定 76
4.4.8 MVTA動力學拆分外消旋β-氨基醇 77
4.4.9 不對稱胺化α-羥基酮氨基供體的選擇 78
4.4.10 pH對不對稱還原胺化反應的影響 78
4.4.11 溫度對不對稱還原胺化反應的影響 78
4.4.12 助溶劑二甲基亞砜（DMSO）濃度對不對稱還原胺化反應的影響 79
4.4.13 底物濃度和產物濃度對不對稱還原胺化反應的影響 80
4.4.14 細胞用量對不對稱還原胺化反應的影響 80
4.4.15 MVTA不對稱胺化α-羥基酮 81
4.4.16 制備S-苯甘氨醇 82
4.5 小結 83
參考文獻 84
第五章 巨大芽孢桿菌轉氨酶BMTA的克隆及其在手性鄰氨基醇合成中的應用 85
5.1 引言 86
5.2 實驗部分 87
5.2.1 材料與試劑 87
5.2.2 實驗方法 87
5.2.3 分析方法 90
5.3 結果與討論 90
5.3.1 ω-轉氨酶BMTA的表達、純化和酶活檢測 90
5.3.2 pH對ω-轉氨酶BMTA活性及穩定性的影響 91
5.3.3 溫度對ω-轉氨酶BMTA活性及穩定性的影響 91
5.3.4 ω-轉氨酶BMTA的底物特異性 92
5.3.5 ω-轉氨酶BMTA動力學拆分外消旋?-氨基醇 93
5.3.6 ω-轉氨酶BMTA不對稱還原胺化羥酮 93
5.3.7 ω-轉氨酶BMTA動力學拆分外消旋苯甘氨醇制備（S）-苯甘氨醇 94
5.4 小結 94
參考文獻 94
第六章 羰基還原酶組合轉氨酶級聯催化外消旋β-氨基醇同時制備手性β-氨基醇和手性鄰二醇 95
6.1 羰基還原酶的克隆與表達 96
6.1.1 引言 96
6.1.2 實驗材料與儀器 96
6.1.3 分析方法 98
6.1.4 實驗方法 99
6.1.5 實驗結果 103
6.1.6 小結 107
6.2 羰基還原酶酶學性質表征 107
6.2.1 引言 107
6.2.2 實驗材料與儀器 108
6.2.3 分析方法 108
6.2.4 實驗方法 109
6.2.5 實驗結果 110
6.2.6 小結 115
6.3 羰基還原酶與葡萄糖脫氫酶在E.coli中共表達及不對稱還原?-羥酮 116
6.3.1 引言 116
6.3.2 實驗材料與儀器 117
6.3.3 分析方法 117
6.3.4 實驗方法 118
6.3.5 實驗結果與分析 121
6.3.6 小結 128
6.4 級聯生物催化外消旋β-氨基醇同時制備手性β-氨基醇和鄰二醇 129
6.4.1 引言 129
6.4.2 實驗材料與儀器 129
6.4.3 實驗方法 130
6.4.4 分析方法 132
6.4.5 結果與分析 132
6.4.6 小結 139
參考文獻 140
第七章 環氨基醇特異性脫氨酶產生菌的篩選及其應用于手性環氨基醇的合成 141
7.1 高活力高選擇性環氨基醇脫氨酶產生菌的篩選 142
7.1.1 引言 142
7.1.2 實驗材料與儀器 142
7.1.3 實驗方法 144
7.1.4 結果與分析 148
7.1.5 小結 154
7.2 節桿菌環己胺氧化酶的克隆及其酶學性質表征 155
7.2.1 引言 155
7.2.2 實驗材料與儀器 155
7.2.3 實驗方法 157
7.2.4 結果與分析 162
7.2.5 小結 170
參考文獻 171
第八章 生物催化環氧化物不對稱開環制備手性β-氨基醇 172
8.1 醇脫氫酶的篩選 173
8.1.1 引言 173
8.1.2 實驗材料 174
8.1.3 實驗方法 177
8.1.4 實驗結果分析 180
8.1.5 小結 182
8.2 立體選擇性級聯生物催化外消旋二醇合成手性β-氨基醇 183
8.2.1 引言 183
8.2.2 實驗材料 183
8.2.3 實驗方法 185
8.2.4 實驗結果 187
8.2.5 小結 191
8.3 三酶共表達重組菌的構建及催化苯乙二醇合成手性β-氨基醇 191
8.3.1 引言 191
8.3.2 實驗材料 191
8.3.3 實驗方法 192
8.3.4 實驗結果 195
8.3.5 小結 198
8.4 多酶級聯催化環氧化物不對稱開環合成手性β-氨基醇 198
8.4.1 引言 198
8.4.2 實驗材料 199
8.4.3 實驗方法 200
8.4.4 實驗結果 212
8.4.5 小結 222
參考文獻 223
第九章 級聯生物催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇的研究 224
9.1 引言 225
9.2 實驗材料 225
9.2.1 實驗藥品 225
9.2.2 培養基 226
9.2.3 實驗儀器 226
9.3 實驗方法 227
9.3.1 重組大腸桿菌的構建 227
9.3.2 重組大腸桿菌的誘導表達 228
9.3.3 目的蛋白質的酶活力檢測 228
9.3.4 凍干酶粉的制備 229
9.3.5 多酶級聯體系催化烯烴1a不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a的條件優化 229
9.3.6 多酶級聯體系催化烯烴1a～j不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a～j 230
9.3.7 共表達體系的構建 231
9.3.8 兩種重組大腸桿菌細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 235
9.3.9 共表達細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 236
9.3.10 E.coli（CGS-DEM）和E.coli（CGS-DEB）制備手性β-氨基醇 237
9.3.11 氣相色譜分析法 237
9.4 結果與討論 239
9.4.1 重組大腸桿菌的構建 239
9.4.2 多酶級聯催化烯烴1a不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a的條件優化 240
9.4.3 多酶級聯催化烯烴1a～j不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇5a～j 242
9.4.4 共表達體系的構建 243
9.4.5 兩種重組大腸桿菌細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 245
9.4.6 共表達細胞催化烯烴不對稱胺羥化合成手性β-氨基醇 247
9.4.7 E.coli（CGS-DEM）和E.coli（CGS-DEB）制備手性β-氨基醇 249
9.5 小結 249
參考文獻 250
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手性β-氨基醇生物催化合成實驗技術 作者簡介
張建棟，太原理工大學，副教授，博士畢業于華東理工大學生物化工專業，在新加坡國立大學從事博士后工作2年。主要研究方向為：生物催化與轉化、合成生物學。目前在太原理工大學生物醫學工程學院從事教學科研工作。作為項目負責人主持自然科學基金面上項目、山西省自然科學青年科技研究基金、生物反應器工程國家重點實驗室開放項目、山西省高等學校科技創新項目、校青年基金項目、太原理工大學人才引進科研啟動項目各一項。在研期間一直從事生物催化方面的研究，在微生物的篩選、基因克隆表達、酶催化性能、蛋白質工程、多酶級聯催化、產物分離純化等方面都具有良好的工作基礎和豐富的工作經驗，并已在相關國內外期刊上發表學術論文30余篇，平均影響因子大于3.3，授權專利3項。
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