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全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅

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出版社：清華大學出版社出版時間：2018-05-01
開本： 16開 頁數： 153
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全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅 版權信息

全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅 本書特色

本書是一本濃縮主編二十多年教學經驗的優秀生理學實驗教材! 生理學實驗是醫學生步入醫學殿堂必練的基本功! 本書根據醫學類本科生培養目標和生理學實驗教學大綱編寫而成，內容包括生理學實驗總論、神經與肌肉、血液、循環、呼吸、消化、泌尿、感覺、神經、內分泌與生殖等組織或系統的主要生理過程和生理指標的觀察與檢測的經典實驗，并以附錄形式列出生理學實驗常用的藥物及溶液、常用計量單位等基本知識。本書可作為醫學類本科學校各專業的生理學教學用書，亦可供非醫學院校的生命科學專業學生和廣大生理學愛好者參考。 本教材適應教學改革和高等院校普遍使用計算機生物信號采集系統的新形勢，編寫中注重突出學生創新能力的培養，堅持教材的系統性、綜合性、研究性和先進性原則。其主要特點是對一些經典的基礎性實驗進行了合并與重組，且更注重實驗體系層次的完善、實驗的可操作性、實驗方法的探索研究以及實驗報告與論文的撰寫，使其更能滿足醫學類各專業在生理學實驗教學中的需要。

全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅 內容簡介

本書是根據醫學類本科生培養目標和生理學實驗教學大綱編寫的實驗教學用書。其內容包括生物機能實驗系統、生理學實驗常用實驗器材、動物實驗基本操作技術以及神經與肌肉、血液、循環、呼吸、消化、泌尿、感覺、神經、內分泌與生殖等系統或組織的經典實驗等，并列出生理學實驗常用的藥物及溶液、常用計量單位等基本知識。本書可作為醫學類本科院校各專業的生理學教學用書，亦可供非醫學院校的生命科學專業學生和廣大生理學愛好者參考。

全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅 目錄

第1 章　總論 1
第1 節　生理學實驗的目的和要求1
第2 節　實驗結果的整理與實驗報告的撰寫.2
第3 節　生理學實驗室規則.3
第2 章　生物機能實驗系統及其使用 5
第1 部分　BL-420 生物機能實驗系統. 5
第1 節　外置式BL-420 生物機能實驗硬件系統5
第2 節　TM-WAVE 軟件系統及操作.6
第2 部分　PowerLab 數據采集分析系統 19
第1 節　PowerLab 數據采集分析系統19
第2 節　PowerLab 數據采集分析系統硬件簡介19
第3 節　LabChart 軟件使用簡介20
第3 章　生理學實驗常用實驗器材及使用方法. 28
第1 節　生理學實驗常用實驗器材28
第2 節　兩棲類動物手術器械.30
第3 節　哺乳類動物手術器械.31
第4 章　動物實驗基本操作技術. 33
第1 節　實驗動物的捉取和固定方法33
第2 節　實驗動物分組及編號的標記方法.36
第3 節　實驗動物的麻醉方法.36
第４節　實驗動物被毛的去除方法38
第5 節　實驗動物的給藥途徑和方法39
第6 節　實驗動物的取血方法.42
第7 節　實驗動物的處死方法.44
第8 節　家兔手術的基本操作.45
第5 章　神經與肌肉實驗. 47
第1 節　坐骨神經- 腓腸肌標本的制備47
第2 節　刺激強度對骨骼肌收縮反應的影響.49
第3 節　骨骼肌的單收縮和復合收縮51
第4 節　強度- 時間曲線與時值的測定52
VI　 生理學實驗指導
第5 節　神經干復合動作電位的觀察與記錄.54
第6 節　神經沖動傳導速度的測定56
第7 節　神經干不應期的測定.57
第6 章　血液實驗. 59
第1 節　紅細胞比容的測定.59
第2 節　紅細胞滲透脆性測定.59
第3 節　紅細胞沉降率實驗.61
第4 節　影響血液凝固的因素.62
第5 節　出血時間測定.63
第6 節　凝血時間測定.64
第7 節　血型的鑒定.65
第7 章　循環系統實驗 67
第1 節　在體蛙類心臟起搏點的分析及傳導阻滯.67
第2 節　蛙類心室肌的期前收縮與代償間歇.68
第3 節　離子和體液因素對離體蛙類心臟的影響.69
第4 節　蛙類微循環的觀察.71
第5 節　人體動脈血壓的測定.73
第6 節　人體體表心電圖的描記74
第7 節　人體心音聽診.76
第8 節　家兔動脈血壓的神經、體液調節.77
第9 節　蟾蜍在體心肌動作電位描記79
第8 章　呼吸系統實驗 82
第1 節　家兔呼吸運動的影響因素82
第2 節　家兔膈神經放電的觀察84
第3 節　肺活量、用力呼氣量和通氣量測定及呼吸音的聽診86
第4 節　影響豚鼠離體支氣管平滑肌運動的因素.89
第9 章　消化系統實驗 92
第1 節　家兔離體小腸平滑肌的生理特性.92
第2 節　家兔在體小腸平滑肌的生理特性.94
第3 節　大鼠胃液的分泌與調節96
第4 節　兔胃運動觀察.98
第5 節　影響家兔膽汁分泌的因素99
第6 節　胃腸運動的肉眼觀察.100
第7 節　影響小鼠小腸推進速度的因素101
第8 節　消化系統功能調節及藥物對腸管的影響.103
第10 章　泌尿系統實驗. 105
第1 節　尿生成的神經體液調節105
目 錄　 VII
第2 節　大鼠離體膀胱平滑肌收縮的影響因素.106
第3 節　腎功能的檢測.109
第11 章　神經系統實驗.112
第1 節　反射時的測定與反射弧分析112
第2 節　去大腦僵直.113
第3 節　破壞小腦動物的觀察.114
第4 節　家兔大腦皮質運動區功能定位115
第5 節　自主神經系統遞質對在體蛙心的作用.117
第12 章　感覺器官實驗119
第1 節　破壞動物一側迷路的效應119
第2 節　聲音的傳導途徑.120
第3 節　瞳孔的調節反射和對光反射121
第4 節　人視覺功能測定.122
第5 節　視野的測定.123
第6 節　盲點的測定.124
第13 章　代謝與內分泌實驗 126
第1 節　小鼠能量代謝的測定.126
第2 節　動物腎上腺摘除后的觀察127
第3 節　胰島素致低血糖效應的觀察128
第4 節　測定垂體激素對卵巢的影響129
第5 節　甲狀腺激素對蝌蚪生長發育的影響.130
第6 節　離體子宮灌流.131
第14 章　設計性實驗 133
第1 節　設計性實驗的定義與特征133
第2 節　設計性實驗選題應遵循的基本原則.134
第3 節　設計性實驗實施的基本要求與程序.134
第4 節　設計性實驗的評價與考核137
第5 節　設計性實驗范例.138
附錄. 141
附錄1　常用生理鹽溶液的配制.141
附錄2　常用麻醉劑的種類及用法.142
附錄3　常用抗凝劑的配制143
附錄4　常用動物的生理、生化指標.144
附錄5　實驗動物用藥物劑量的確定.151
參考文獻 154

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全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅 節選

　　第 1節　生理學實驗常用實驗器材　　一、換能器　　換能器又稱傳感器，是指將機體生理活動的非電信號轉換成與之有確定函數關系的電信號的變換裝置。換能器的種類繁多，生理學實驗常用的主要有壓力換能器和張力換能器兩種。　　1．壓力換能器（圖　　3-1）　主要用于測量血壓、心內壓、顱內壓、胸腔內壓、胃腸內壓、眼內壓等。采用惠斯登電橋原理工作，當外界壓力作用于換能器時，敏感元件的電阻值發生變化，引起電橋失衡，使換能器產生電信號。　　2．張力換能器（圖　　3-2）　主要用于記錄肌肉收縮曲線，其工作原理與壓力換能器相似，張力換能器可把張力信號轉換成電信號。　　圖 3-1　壓力換能器圖 3-2　張力換能器　　二、刺激電極　　刺激電極的種類很多，在生理實驗中常用的有普通電極、保護電極等。　　1．普通電極（圖　　3-3）　常用于刺激離體的組織，電極前端為鱷魚夾形式，使用時夾在刺激電極的連接部位，以接觸組織。　　2．保護電極（圖　　3-4）　刺激在體深部組織時，避免電流刺激周圍組織，常需用保護電極。電極的金屬絲包　　圖 3-3　普通刺激電極埋在絕緣套內，前端僅有一側槽露出電極絲作用于組織。　　3．鋅銅弓（圖 3-5）　常作為電刺激用以檢查坐骨神經 -腓腸肌標本功能是否良好。其基本原理為將鋅銅弓置于電解質溶液中，由于鋅的電極電位為－0.76V，銅的電極電位為＋0.34V，當鋅銅弓與濕潤的活體組織接觸時，鋅失去電子成為正極，使細胞膜超極化；而銅得到電子成為負極，使細胞膜去極化而興奮，電流按鋅 →活體組織 →銅的方向流動，形成刺激。注意，用鋅銅弓測試時，活體組織表面必須濕潤。　　圖 3-4　保護電極圖 3-5　鋅銅弓　　三、引導電極　　1．普通引導電極（圖 3-6）　用于一般生物電的引導。　　2．　　神經放電引導電極（圖 3-7）　用于引導神經放電。　　3．　　全導聯引導電極（圖 3-8）　用于全導聯心電圖的引導。　　四、生理肌槽　　生理肌槽（圖 3-9），又稱肌動器。用于固定和刺激蛙類神經 -肌肉標本。常用的有槽式和平板式等；裝有刺激電極、固定標本的孔和螺絲、杠桿等。　　圖 3-6　普通引導電極　　圖 3-7　神經放電引導電極圖 3-8　全導聯引導電極　　圖 3-9　生理肌槽　　（孟　超　王冰梅）　　第 2節　兩棲類動物手術器械　　兩棲類動物是生理學實驗常用的實驗動物，它的手術器械主要包括（圖 3-10）：　　圖 3-10　兩棲類動物手術器械　　1．粗剪刀　　又稱中國剪，在兩棲類動物實驗中用于剪動物的骨骼和皮膚等粗硬組織。　　2．組織剪　　在兩棲類動物實驗中用于剪動物的肌肉、內臟等軟組織。　　3．眼科剪　　又稱虹膜剪，用于剪動物的神經和血管等細軟組織。　　4．組織鑷　　用于夾持組織及牽拉切口處的皮膚（因其對組織的損傷性小）。　　5．眼科鑷　　用于夾捏較小的組織。　　6．金屬探針　　用于破壞動物的腦和脊髓。　　7．玻璃分針　　用于分離神經和血管等組織。　　8．鋅銅弓　　用于對神經 -肌肉標本施加刺激，以檢查其興奮性。　　9．蛙心夾　　使用時將一端夾住心尖，另一端借絲線連于張力換能器，以描記心臟搏動。　　10．蛙板　約為 20cm×15cm的木板或塑膠板，用于固定蛙類以便進行實驗。可用蛙釘或大頭針將蛙腿釘在木板上。如制備神經 -肌肉標本，應在清潔的玻璃板上操作。為此可在木板上放一塊適當大小的玻璃板。使用時，在玻璃板上先放少量任氏液，然后把去除皮膚的蛙后肢放在玻璃板上分離、制作標本。　　11．培養皿　盛放任氏液，可將已做好的神經 -肌肉標本置于此液中。　　（王冰梅　孟　超）　　第 3節　哺乳類動物手術器械　　常用的基本手術器械有手術刀、手術剪、手術鑷、止血鉗、持針器、縫合針等（圖 3-11），現分述如下：　　1．手術刀　主要用于切開和分離組織，由刀柄和刀片兩部分構成。裝刀方法是將刀片裝置于刀柄前端的槽縫內。　　刀片有不同大小和外形，刀柄也有不同的規格，常用的刀柄規格為 4、6、8號，這 3種型號刀柄只安裝 19、20、21、22、23、24號大刀片； 3、5、7號刀柄安裝 10、11、12、15號小刀片。按刀刃的形狀可分為圓刃手術刀、尖刃手術刀和彎形尖刃手術刀等。包括刀柄和刀片。　　執刀的方法必須正確，動作的力量要適當。執刀的姿勢和動作的力量根據不同的需要有下列幾種：　　（1）指壓式（捉刀式）（圖 3-12）：為常用的一種執刀法。以手指按刀背后 1/3處，用腕與手指力量切割。適用于切開皮膚、腹膜及切斷鉗夾組織。　　圖 3-11　哺乳類動物手術器械圖 3-12　手術刀的持法（指壓式）　　（2）執筆式：如同執鋼筆。動作涉及腕部，力量主要在手指，需用小力量短距離精細操作，用于切割短小切口，分離血管、神經等。　　（3）全握式（抓持式）：力量在手腕。用于切割范圍廣、用力較大的切開，如切開較長的皮膚切口、筋膜、增生組織等。　　（4）反挑式（挑起式）：即刀刃將組織由內向外面挑開，以免損傷深部組織，如腹膜的切開。　　手術刀的使用范圍，除了刀刃用于切割組織外，還可以用刀柄作組織的鈍性分離，或代替骨膜分離器剝離骨膜。在手術器械數量不足的情況下，暫可代替手術剪作切開腹膜，切斷縫線等。　　2．剪毛剪　　即彎手術剪，用于剪除動物的毛發。　　3．組織剪　　可沿組織間隙分離和剪斷組織，用于剪開皮膚和皮下組織、筋膜和肌肉等。　　4．剪線剪　　用于術中剪手術絲線。　　5．眼科剪　　用于剪神經、血管和輸尿管等。　　6．組織鑷　用于夾持、穩定或提起組織以利切開及縫合。有不同的長度。鑷的尖端分有齒及無齒（平鑷），又有短型、長型、尖頭與鈍　　頭之別，可按需要選擇。有齒鑷損傷性大，用于夾持堅硬組織。無齒鑷損傷性小，用于夾持脆弱的組織及臟器。精細的尖頭平鑷對組織損傷較輕，用于血管、神經、黏膜手術。　　執鑷方法是用拇指對示指和中指執拿，執鑷力量應適中，見圖 3-13。圖 3-13　持鑷方法　　32　生理學實驗指導　　7．眼科鑷　用于夾捏細軟組織等。　　8．止血鉗　又叫血管鉗，主要用于夾住出血部位的血管或出血點，以達到直接鉗夾止血，有時也用于分離組織、牽引縫線。止血鉗一般有彎、直兩種，并分大、中、小等型，分離小血管及神經周圍的結締組織用蚊式鉗。持鉗方法同持剪法。　　（1）彎血管鉗：用以夾持深部組織或內臟血管出血，有長短兩種。　　（2）直血管鉗：用以夾持淺層組織出血，協助拔針等用。　　（3）有齒血管鉗（有齒直鉗）：用以夾持較厚組織及易滑脫組織內的血管出血，如腸系膜、大網膜等，前端齒可防止滑脫，但不能用以皮下止血。　　（4）蚊式血管鉗：為細小精巧的血管鉗，有直（ straight）、彎（ curved）兩種，用于臟器、面部及整形等手術的止血，不宜做大塊組織鉗夾用。　　9．持針器　又稱持針鉗，用于夾持縫合針縫合組織，有握式和鉗式兩種形式，獸醫外科臨床常使用握式持針器。　　使用持針鉗夾持縫針時，縫針應夾在靠近持針鉗的尖端，一般應夾在縫針的針尾 1/3處，縫線應重疊 1/3，以便操作。常用執持針鉗方法：　　（1）掌握法：也叫一把抓或滿把握，即用手掌握拿持針鉗。　　優點：此法縫合穩健，容易改變縫合針的方向，縫合順利，操作方便。　　（2）指套法，為傳統執法。用拇指、無名指套入鉗環內，以手指活動力量來控制持針鉗的開　　閉，并控制其張開與合攏時的動作范圍。缺點：因距支點遠而穩定性差。　　（3）掌指法：拇指套入鉗環內，示指壓在鉗的前半部做支撐引導，其余三指壓鉗環固定于掌中。拇指可以上下開閉活動，控制持針鉗的張開與合攏。　　10．縫合針　主要用于閉合組織或貫穿結扎。　　縫合針分為兩種類型，一種是帶線縫合針或稱無孔縫合針：縫線已包在針尾部，針尾較細，僅單股縫線穿過組織，使縫合孔道*小，因此對組織損傷小，又稱為“無損傷縫針”。這種縫合針有特定包裝，保證無菌，可以直接使用；多用于血管、腸管縫合。另一種是有孔縫合針，有孔縫合針以針孔不同分為兩種：一種為穿線孔縫合針，縫線由針孔穿進；另一種為彈機孔縫合針，針孔有裂槽，縫線由裂槽壓入針眼內，穿線方便，快速。　　縫合針規格分為直型、 1/2弧型、 3/8弧型和半彎型。　　縫合針尖端分為三角形和圓錐形。三角形針有銳利的刃緣，能穿過較厚致密組織。三角形針分為傳統彎縫合針，針切緣刃沿針體凹面；翻轉彎縫合針切緣刃沿針體凸面，這種縫合針比傳統彎縫合針有兩個優點，對組織損傷較小，增加針體強度。直型圓針用于胃腸、子宮、膀胱等縫合，用手指直接持針操作，此法動作快，操作空間較大；彎針有一定弧度，操作靈便，不需要較大空間，適用深部組織縫合。縫合部位越深，空間越小，針的弧度應越大。彎針需用持針器操作。三角針適用于皮膚、腱、筋膜及瘢痕組織縫合。　　11．動脈夾　用于阻斷動脈血流。　　12．氣管插管　　用于急性動物實驗時插入氣管，以保證呼吸道通暢。一端接呼吸換能器或壓力換能器以記錄呼吸運動。　　13．血管插管　　用于動脈、靜脈插管。血管插管可用相應口徑的聚乙烯管代替。實驗時一端插入動脈或靜脈，一端接壓力換能器以記錄血壓，插管時，管腔內應排出所有氣泡，以免影響實驗結果。　　14．三通開關　可按實驗需要改變液體流動的方向，便于靜脈給藥、輸液和描記動脈血壓。　　（魏　琳　王冰梅）　　一、蟾蜍第 1節　實驗動物的捉取和固定方法　　抓取蟾蜍時不要擠壓兩側耳部突起的毒腺，以免蟾蜍將毒液噴射入實驗者眼內。取用時，將其背部靠著左手手心固定住，用右手將后肢拉直，并用左手的中指、無名指及小指環夾住，前肢及頭部用拇指及示指壓住，右手即可進行實驗操作（圖 4-1）。　　在進行動物微循環觀察等需較長時間固定實驗時，可將蟾蜍麻醉或搗毀腦脊髓，用蛙釘釘住動物的四肢和舌，將腸系膜固定在帶孔木制蛙板上，在顯微鏡下觀察舌、腸系膜的血液循環狀態。　　二、小鼠　　小鼠一般不會咬人，但取用時動作也要輕緩。先用右手抓住鼠尾提起，放在實驗臺等粗糙表面，在其向前爬行時，用左手的拇指和示指抓住小鼠的兩耳和頭頸部皮膚，然后將鼠體置于左手心中，把后肢拉直，用左手的無名指及小指按住鼠尾，即可做注射或其他實驗操作（圖 4-2）。　　圖 4-1　蟾蜍的持法圖 4-2　小鼠抓取方法　　三、大鼠　　大鼠的牙齒很尖銳，不要突然襲擊式地去抓它，這樣容易被咬傷手指。初學者應戴上較厚的棉布手套，其抓取動作與小鼠相似，右手輕輕抓住大鼠的尾巴向后拉，左手抓緊鼠兩耳和頭頸部的皮膚，并將鼠固定在左手中，右手即可進行操作（圖 4-3）。　　如果需要長時間固定做手術時，可參照固定兔的方法，將鼠固定在大鼠固定臺上。　　四、豚鼠　　先用手掌迅速扣住豚鼠背部及頸部，進行捉取。懷孕或體重較大的豚鼠，應以另手托其臀部（圖 4-4）。　　圖 4-3　大鼠抓取方法圖 4-4　豚鼠的抓取方法　　五、家兔　　從籠中捉兔時，先輕輕打開籠門，勿使受驚，隨之用手伸入籠內，從頭前阻攔，兔便匍伏不動。此時用右手把兩耳輕壓于手心內，抓住頸后部的皮膚，提起兔，然后用左手托住它的臀部，兔身的重量大部分落入左手上。　　切忌用手抓家兔的兩耳、提抓腰部或背部。實驗工作中常用兔作采血、靜脈注射等用，所以家兔的兩耳應盡量保持不受損傷（圖 4-5～圖 4-8）。　　圖 4-5　抓兔的方法（ 1，2，3均不正確， 4，5為正確的捉取方法）　　圖 4-6　兔手術固定臺　　圖 4-7　固定臺固定兔的方法圖 4-8　兔盒固定兔方法　　六、狗　　要用特制的鉗式長柄捕狗夾夾住狗頸部，注意不要夾傷嘴和其他部位。夾住頸后，使狗頭向上，頸部拉直，然后套上狗鏈。　　急性實驗時，可用捕狗夾夾住狗頸部后，將它壓倒在地，由助手將其四肢固定好，剪去前肢或后肢皮下靜脈部位的被毛，靜脈注射麻醉藥使動物麻醉后，即可進行實驗（圖 4-9～圖 4-11）。　　圖 4-9　鉗式長柄捕狗夾　　圖 4-10　狗嘴的捆綁方法圖 4-11　狗手術固定臺　　（王冰梅　李馳坤）　　36　生理學實驗指導　　第 2節　實驗動物分組及編號的標記方法　　科研中為了觀察每個動物的變化情況，必須在實驗前進行隨機分組和編號標記。　　一、分組　　實驗動物的分組原則為按照性別、體重進行隨機平均分組。一般小型動物（如小鼠、大鼠、豚鼠等）為每組 10只，大型動物如兔、狗、貓等可酌減，每組 4～6只。實驗方法另有規定者除外。　　二、編號的標記方法　　1．　　大鼠、小鼠　　常采用化學藥品涂染法。　　經常應用的涂染化學藥品有：　　涂染紅色： 0.5%中性紅或品紅溶液；　　涂染黃色： 3%～5%苦味酸溶液；　　涂染黑色：煤焦油的酒精溶液。　　2．狗　　（1）將號碼烙壓在圓形或方形金屬牌上（*好用不銹鋼或鋁的），實驗前用鐵絲穿過金屬牌上的小孔，固定在狗鏈條上。　　（2）將號碼按實驗分組編號烙在拴狗頸部的皮帶圈上，將此頸圈固定在狗頸部。　　（3）將狗舍進行編號，對號飼養。　　3．兔、豚鼠　　（1）頸部掛金屬牌。　　（2）籠具進行編號。　　（3）化學藥品涂染法。　　（王冰梅　王曉燕）　　第 3節　實驗動物的麻醉方法　　一、使用揮發性麻醉藥　　1．乙醚、嗎啡合并麻醉方法優點：深度易于掌握，比較安全，麻醉后恢復比較快。缺點：需要專人管理，麻醉初期出現強烈的興奮現象，對呼吸道有較強的刺激性，需在麻醉　　前給予基礎麻醉，即在麻醉前 20～30min，皮下注射鹽酸嗎啡或硫酸嗎啡（ 5～10mg/kg）及阿托品（ 0.1 mg/kg）。　　2．氯仿、乙醚合并麻醉方法　氯仿作吸入麻醉藥，其麻醉作用比乙醚大，誘導期及興奮期都極短，吸入氣體中含 1%～2%容量的氯仿即能使動物麻醉，容易達到外科麻醉期，但也易轉入延髓麻醉期而危及生命。其麻醉劑量及致死量較為接近，使用時應加以注意。一般與乙醚混合成 1∶1或 1∶2比例進行麻醉。方法基本同乙醚麻醉法。　　第 4章　動物實驗基本操作技術　 37　　二、使用非揮發性麻醉藥　　1．苯巴比妥鈉　　該藥作用持久，應用方便，在普通麻醉用量下對動物呼吸、血壓和其他功能影響不大。通常在實驗前 0.5～1h用藥。　　使用劑量和方法：狗、貓腹腔注射 80～100mg/kg，靜脈注射 70～120mg/kg；家兔腹腔注射 150～200mg/kg。　　2．戊巴比妥鈉　　采用此藥麻醉，一次給藥有效時間可延續 3～5h，十分適合一般實驗要求。給藥后對動物循環和呼吸系統無顯著抑制作用。用時配成 1%～3%生理鹽水溶液，配好的藥液在常溫下放置 1～2個月不失藥效。靜脈或腹腔注射后很快進入麻醉期。　　使用劑量和方法：狗、貓、兔靜脈注射 30～35mg/kg，腹腔注射 40～45mg/kg，皮下注射 40～50mg/kg；大鼠靜脈或腹腔注射 35～50mg/kg。　　3．氨基甲酸乙酯　　此藥是比較溫和的麻醉藥，安全程度高。多數動物都可以使用，尤其適合于小動物，一般用作基礎麻醉，使用時常配成 20%～25%水溶液。　　使用劑量和方法：狗、貓、兔直腸灌注 1.5g/kg，皮下、靜脈、腹腔注射 0.75～1g/kg。與水合氯醛按 1∶1合并麻醉效果更好。　　4．水合氯醛　此藥有穿透性的臭氣及腐蝕性苦味。其溶解度較小，常配成 10%水溶液。使用前先在水浴鍋中加熱，促其溶解，但加熱溫度不宜過高，以免影響藥效。使用劑量和方法：狗、貓靜脈注射 80～100mg/kg，腹腔注射 100～150mg/kg；兔直腸灌注 180mg/kg，靜脈注射 50～75mg/kg。　　以上麻醉藥種類雖較多，但各種動物采用的種類多有所側重，如作慢性實驗的動物常用乙醚吸入麻醉（用嗎啡和阿托品作基礎麻醉）；急性動物實驗對狗、貓和大鼠常用戊巴比妥鈉麻醉；對家兔和蛙、蟾蜍常用氨基甲酸乙酯；對大鼠和小鼠常用戊巴比妥鈉或氨基甲酸乙酯麻醉。　　三、使用全身麻醉劑的注意事項　　1．　　麻醉劑的用量，除參照一般標準外，還應考慮個體對藥物的耐受性差異，動物的體重與所需麻醉劑量間并不呈絕對的正比關系。一般來說，衰弱和過胖的動物其單位體重所需劑量較小。在使用麻醉劑過程中，隨時檢查動物的反應情況，尤其是采用靜脈注射方式時，絕不可將按體重計算出的用量匆忙進行注射。　　2．動物在麻醉期體溫容易下降，要采取保溫措施。　　3．　　靜脈注射必須緩慢，同時觀察肌肉緊張性、角膜反射和對皮膚夾捏的反應，當這些活動明顯減弱或消失時，立即停止注射。配制的藥液濃度要適中，不可過高，以免麻醉過急，但也不能過低，以減少注入溶液的體積。　　4．做慢性實驗時，在寒冷的冬季，麻醉劑在注射前應加熱至動物體溫水平。　　四、麻醉過量的處理方法　　麻醉過量時，應按過量的程度采取不同的處理方法。如動物呼吸極慢而不規則，但血壓和心搏仍正常時，可施行人工呼吸（人工呼吸機），并給蘇醒劑（常用的蘇醒劑有咖啡因、苯丙胺、尼克剎米等）。若動物呼吸停止，血壓下降，但心搏仍可摸到時，應迅速施行人工呼吸，同時注射溫熱的 50%葡萄糖溶液 5～10mL，并給腎上腺素溶液和蘇醒劑。　　……

全國高等醫藥院校實驗教材生理學實驗指導/王冰梅 作者簡介

　　王冰梅，1993年畢業于白求恩醫科大學，獲醫學學士學位；2002年畢業于吉林大學，獲碩士學位；2007年畢業于吉林大學，獲博士學位。2006年獲霍英東教育基金會第十屆青年教師獎。　　1993年至今，一直在長春中醫藥大學生理教研室從事生理學的教學與科研工作。從教20年來，多次榮獲優秀教師、教師技能大賽一等獎等教學獎勵。參編公開出版的理論教材2部（均為編者），在2部實驗教材中擔任主編，1部實驗教材中擔任副主編，參編其它圖書5部。

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